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     說明書，耗材：DNA 制備管、小量濾器、2 ml 離心管、1.5 ml 離心管。

     RNase A：50 mg/ml，室溫保存。

     Buffer G-A：裂解液，室溫密閉貯存。

     Buffer G-B：蛋白去除液，室溫密閉貯存。

     Buffer DV-A：Buffer DV 的制備液，請參照實驗準備Buffer DV 的配制方法配制，室溫密閉貯存。

     Buffer DV：相分離液，室溫密閉貯存。

     Buffer BV：DNA 結(jié)合液，室溫密閉貯存。

     Buffer W1：洗滌液，室溫密閉貯存。

     Buffer W2 concentrate：去鹽液。使用前，按試劑瓶上指定的體積加入無水乙醇，混合均勻，室溫密

閉貯存。可用100%乙醇或95%乙醇。

     Eluent：2.5 mM Tris-HCl，pH 8.5，室溫密閉貯存。

     Buffer G-A、Buffer G-B、Buffer BV 和Buffer W1 含刺激性化合物，操作時要戴乳膠手套和眼鏡，

避免沾染皮膚、眼睛和衣服，謹防吸入口鼻。若沾染皮膚、眼睛時，要立即用大量水沖洗，必要時尋

求醫(yī)療咨詢。

     1. 第一次使用時，在Buffer W2 concentrate 中按試劑瓶上指定的體積加入無水乙醇并混合均勻。

     2. 制備Buffer DV：取2 ml Buffer DV-A，125 ml 異丙醇，75 ml 異丁醇，加入提供的250 ml 試劑瓶

中，混合均勻。

     3. 4℃預(yù)冷Buffer DV。

     4. 準備65℃水浴。

     5. 使用前檢查Buffer G-A 和Buffer G-B 是否有沉淀析出，若出現(xiàn)沉淀，請于65℃水浴加熱至沉淀完

全溶解后再使用。

     6. 將Eluent 或去離子水加熱至65℃有利于基因組DNA 的充分洗脫。

從樣品中提取基因組DNA

不同的樣品采用不同的勻漿步驟。

步驟1-3 請根據(jù)不同的實驗條件選擇對應(yīng)的操作

使用研缽進行勻漿

     1. 取1-20 mg 動物或人組織，移入冰水浴預(yù)冷的研缽中，快速、用力研磨成勻漿。

* 列組織請加液氮研磨至粉末狀后，將研缽置于65℃水浴，當粉末開始融化時繼續(xù)研磨1 min，勻漿后加入650 μl

Buffer G-A 和0.9 μl RNase A，再進入步驟3 的操作下。

      A. 富含DNA 酶的胰臟，脾臟，胸腺，淋巴等組織。

      B. 富含膠原蛋白的皮膚、肌健等組織。

      C. 富含角質(zhì)蛋白的組織或堅硬的組織如骨骼等。

     2. 加入650 μl Buffer G-A 和0.9 μl RNase A 后溫和地研磨30 s。

     3. 收集650 μl 研磨好的組織勻漿并轉(zhuǎn)入2 ml 離心管。如勻漿體積不足650 μl，補充Buffer G-A 至650 μl，65℃水浴5 min。

     1.按下表稱取適量的新鮮植物組織（如選用的是冷凍干燥的組織，則組織用量減半）。剪成小塊放入研缽中；如從培養(yǎng)的植物細胞中提取基因組DNA，收集2×103-1×107 培養(yǎng)的植物細胞，10,000×g 離心1 min，加入150 μl 水充分懸浮細胞并轉(zhuǎn)入研缽中，加入液氮，使組織冷凍完全后，快速、用力研磨至粉末狀。研磨時應(yīng)間斷加入液氮以防止組織融化，研磨充分后將研缽放入65℃水浴至樣品粉末剛開始融化。

     * 表1 新鮮植物樣品使用量按下表收集

     植物花或葉片 10-100 mg

     植物莖 ≤240 mg

     植物根 ≤240 mg

     植物種子 ≤240 mg

     * 如新鮮植物葉超過120 mg 或干植物葉超過60 mg，加入1300 μl Buffer G-A，勻漿后將樣品分到兩個2 ml 離心管中，然后按照步驟1-7 平行操作兩管，第8 步和接下來的步驟合并到一管操作，以提高洗脫的DNA 的濃度。

     * 樣品研磨應(yīng)充分，否則嚴重影響基因組DNA 的得率。

     2. 加入700 μl Buffer G-A 和1.2 μl RNase A 貯存液，用力碾磨30 s。

     3. 轉(zhuǎn)移650 μl 研磨好的勻漿至2 ml離心管中，如勻漿體積不足650 μl,補充Buffer G-A 至650 μl，65℃水浴15 min。

     * 富含纖維的根/莖等組織或富含淀粉、蛋白質(zhì)的種子等樣品，可延長水浴時間至60 min。

     步驟1-2 應(yīng)根據(jù)培養(yǎng)細胞的類型來操作，若從植物細胞中提取基因組DNA，請按步驟(從植物組織中提取基因組DNA)來勻漿

      A. 懸浮培養(yǎng)的動物細胞或新鮮分離的動物組織單細胞懸液

       1A. 用2 ml 離心管收集1×103-2×106 細胞懸浮液，2,000×g 離心5 min，棄盡上清。

       2A. 加入150 μl 去離子水或PBS 懸浮細胞，加入500 μl Buffer G-A。

      B. 單個細胞培養(yǎng)或96孔培養(yǎng)板、24 孔培養(yǎng)板、12 孔培養(yǎng)板和6孔培養(yǎng)板細胞培養(yǎng)

       1B. 盡可能的丟掉上清液，加650 μl Buffer G-A 到每孔中，室溫靜置1 min。

       2B. 用吸頭來回吸注幾次，轉(zhuǎn)移650 μl 勻漿至2 ml 離心管，如勻漿體積不足650 μl，補足Buffer G-A 至650 μl。加入0.8 μl RNase A,旋渦振蕩15 s，室溫靜置1 min。

      1. 收集2×106-5×107 酵母細胞，10,000×g 離心 1min。用150 μl 水懸浮酵母細胞并轉(zhuǎn)移至研缽中，加入液氮，待樣品被完全冷凍后，快速、用力研磨至粉末狀。將研缽放入65℃水浴至樣品粉末剛開始融化時進入下一步操作。

     * 當OD680 為1 時，酵母濃度為3×107 細胞/ml。

     * 酵母細胞壁較為堅韌，應(yīng)適當延長研磨時間和研磨次數(shù)以確保充分破碎酵母細胞壁。

     * 研磨時應(yīng)及時加入液氮，防止樣品在研磨時融化。

     2. 加入600 μl Buffer G-A 和1.2 μl RNase A 貯存液，快速用力碾磨30 s。

     3. 轉(zhuǎn)移650 μl 研磨好的勻漿至2 ml 離心管中，如勻漿體積不足650 μl，補充Buffer G-A 至650 μl，65℃水浴10 min。

     4. 加入400 μl Buffer G-B 和1 ml Buffer DV（4℃預(yù)冷），用力混合均勻。12,000×g 離心2 min。

     * 請在實驗前按照實驗準備步驟2 準備Buffer DV.

     5. 盡可能丟棄上相，保留相間沉淀和下相。加入1 ml 4℃預(yù)冷Buffer DV，用力混合，12,000×g 離心2 min。

     6. 丟棄上相，將下相轉(zhuǎn)移至濾器（濾器置于2 ml 離心管中），12,000×g 離心1 min。

     * 上相無需完全棄盡，在轉(zhuǎn)移無色下相時偶有混入的上相，可在Tip 頭內(nèi)迅速分相，便于丟棄。

     * 如在轉(zhuǎn)移過程中吸入少量界面沉淀，不必去除，可過濾除去。

     * 有色上相務(wù)必除盡，否則將抑制DNA 結(jié)合到silica 膜上。

     7. 棄濾器，在濾液中加入400 μl Buffer BV，混合均勻。

步驟8-11，可選擇離心法或負壓法

     A．負壓法

      8A. 將DNA 制備管插到負壓裝置的插口上，將步驟7 的混合液移到制備管中，開啟并調(diào)節(jié)負壓裝置至-20-30 英寸汞柱。

      9A. 保持負壓，加入500 μl Buffer W1,吸盡管中液體。

     10A. 保持負壓，加入700 μl 已加入乙醇的Buffer W2，吸盡管中液體；已同樣的方法再用700 μlBuffer W2 洗滌一次。

     * 確認在Buffer W2 concentrate 中已按試劑瓶上的指定體積加入無水乙醇。

     * 沿管壁加入Buffer W2 有助于徹底沖洗附在管壁上的鹽分。

     * 兩次用Buffer W2 沖洗能確保鹽分被完全消除，消除對酶切反應(yīng)的影響。

     11A. 將DNA 制備管放回2 ml 離心管中，12,000×g 離心1 min。

     B．離心法

      8B. 將DNA 制備管置于2 ml 離心管中，將步驟7 中的混合液移至制備管中，12,000×g 離心1 min。

      9B. 棄濾液，將制備管置回到原來的2 ml 離心管中，加入500 μl Buffer W1，12,000×g離心1 min。

     10B. 棄濾液，將制備管置回到原來的2 ml 離心管中，加入700 μl Buffer W2，12,000×g 離心1 min，以同樣的方法，用700 μl Buffer W2 再洗滌一次。

     * 確認Buffer W2 concentrate 中已按試劑瓶上指定的體積加入無水乙醇。

     * 再次用Buffer W2 沖洗能確保鹽份被完全清除，消除對酶切反應(yīng)的影響。

     11B. 棄濾液，將制備管置回原來的2 ml 離心管中，12,000×g 離心1 min。

     12. 將DNA 制備管置于另一潔凈的1.5 ml 離心管中，在silica 膜中央加100-200 μl Eluent 或去離子水，室溫靜置1 min，12,000×g 離心1min 洗脫DNA。

     * 將去離子水或Eluent 加熱至65℃將提高洗脫效率。